一、CDX模型構建的核心特點

二、CDX模型構建流程

1. 腫瘤細胞準備

• 細胞系選擇：

• 肺癌：A549（非小細胞肺癌）、H1975（EGFR突變）

• 結直腸癌：HCT116、SW480

• 乳腺癌：MCF-7（ER+）、MDA-MB-231（三陰性）

• 常用細胞系（示例）：

• 需定期STR鑒定，避免交叉污染。

• 細胞培養：

• 使用含10% FBS的培養基（如DMEM/RPMI-1640），傳代至對數生長期。

• 胰m消化后計數，調整細胞濃度（通常1×10?–5×10? cells/mL）。

2. 實驗動物選擇

• 免疫缺陷鼠：

• 裸鼠（BALB/c nude）：T細胞缺陷，適合大多數實體瘤。

• NSG（NOD-scid IL2Rγ?/?）：高度免疫缺陷，適合低成瘤性細胞。

• 飼養環境：SPF級屏障系統，避免感染。

3. 移植方法

(1) 皮下移植（最c用）

• 步驟：

1. 麻醉小鼠（異f烷或腹腔注射戊巴b妥鈉）。

2. 背部或側腹皮膚消毒（酒精+d伏）。

3. 皮下注射腫瘤細胞懸液（100–200 μL，含1×10?–5×10? cells）。

4. 觀察注射部位是否形成明顯皮丘（避免漏液）。

• 優點：操作簡單，易于監測腫瘤體積。

(2) 原位移植（模擬腫瘤微環境）

• 示例：

• 肝癌：脾臟注射（細胞遷移至肝）。

• 肺癌：氣管內注射或尾靜脈注射（肺轉移模型）。

• 乳腺癌：乳腺脂肪墊注射（4號乳頭周圍）。

• 優點：更接近臨床病理特征，但手術難度較高。

(3) 尾靜脈注射（轉移模型）

• 注射1×10?–1×10? cells（100 μL PBS），4–6周后解剖檢測肺/肝轉移灶。

4. 模型監測與數據分析

• 腫瘤體積測量：

• 游標卡尺測量長徑（L）和短徑（W），按公式計算：

  $$\text{Volume}=\frac{L\times W^2}{2}$$

• 每周測量2–3次，體積達1000–1500 mm3時需終止實驗（倫理限制）。

• 終點指標：

• 腫瘤重量：解剖后稱重。

• 組織學分析：H&E染色、Ki-67（增殖）、TUNEL（凋亡）。

• 分子檢測：qPCR/WB檢測靶基因表達。

三、CDX模型的應用

1. 抗腫瘤藥物篩選

• 分組設計：對照組（PBS）、實驗組（化療藥/靶向藥）。

• 評價指標：抑瘤率（$\frac{\text{對照組體積－實驗組體積}}{\text{對照組體積}}\times 100\mathrm{\%}$）、生存期。

2. 基因功能研究

• 構建穩定敲除/過表達細胞系（如CRISPR-Cas9），比較成瘤能力差異。

3. 免疫治療模型（需人源化小鼠）

• 共移植人PBMC或免疫檢查點抑制劑（如抗PD-1抗體）。

四、常見問題與解決方案