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膿毒癥模型構建

膿毒癥模型構建

簡要描述:
構建膿毒癥(Sepsis)動物模型是研究全身性炎癥反應、多器官功能障礙及潛在治療手段的關鍵工具。以下是基于不同致病機制的膿毒癥模型構建方案(以小鼠為例),涵蓋細菌感染、內毒素血癥及臨床相關性模型。

更新時間:2025-06-23

訪問量:81

廠商性質:其他

一、膿毒癥模型構建選擇依據

模型類型適用研究優缺點
內毒素模型全身炎癥反應機制操作簡單,但缺乏活菌感染的動態過程
活菌感染模型敗血癥病理生理學更接近臨床,但需控制感染劑量
盲腸結扎穿孔多器官功能障礙(CLP模型)金標準,但手術難度高,變異性大
結腸支架植入可控的腹腔感染源重復性好,需特殊材料

二、經典膿毒癥模型構建方法

1. 內毒素(LPS)誘導的膿毒癥模型

適用:研究全身性炎癥風暴、細胞因子釋放
步驟

  1. LPS準備:溶解大腸桿菌O111:B4 LPS于無菌PBS(1-5 mg/mL)。

  2. 注射劑量

    • 低劑量(1-5 mg/kg腹腔注射):模擬輕度膿毒癥。

    • 高劑量(10-20 mg/kg靜脈注射):誘導休克樣反應(6-24h內死亡)。

  3. 觀察指標

    • 體溫下降(紅外測溫)、血清IL-6/TNF-α(ELISA)、肺/肝組織病理損傷。

注意事項

  • 不同小鼠品系對LPS敏感性差異大(C57BL/6較BALB/c更耐受)。

2. 活菌感染模型(以大腸桿菌為例)

適用:抗生素療效評估、免疫應答研究
步驟

  1. 菌液制備

    • 培養大腸桿菌(ATCC 25922)至對數期,離心后重懸于PBS(調整至1×10^8-10^9 CFU/mL)。

  2. 感染途徑

    • 腹腔注射:200 μL菌液(1×10^7-10^8 CFU/鼠),導致腹膜炎繼發敗血癥。

    • 尾靜脈注射:100 μL菌液(1×10^6-10^7 CFU/鼠),模擬血源性感染。

  3. 監測

    • 每6小時記錄生存率,24h后取血/器官CFU計數。

關鍵點

  • 預實驗確定LD50(通常1×10^7 CFU腹腔注射致死率50%)。

3. 盲腸結扎穿孔(CLP)模型

適用:臨床相關性強的多微生物膿毒癥模型
手術步驟

  1. 麻醉與備皮:異fu烷麻醉,腹部剃毛消毒。

  2. 開腹:正中切口1-2 cm,暴露盲腸。

  3. 結扎與穿孔

    • 結扎盲腸遠端1/3(4-0絲線),避免腸系膜血管損傷。

    • 21G針頭穿孔2次,擠出少量糞便。

  4. 關腹:生理鹽水沖洗腹腔,縫合肌肉和皮膚。

  5. 復蘇:皮下注射1 mL生理鹽水補液,保暖復蘇。

分級標準

  • 輕度:結扎1/2盲腸,單次穿孔(48h死亡率30-50%)。

  • 重度:結扎3/4盲腸,兩次穿孔(24h死亡率>80%)。

注意事項

  • 術后需鎮痛(如布tuo啡諾),避免空腹手術。


三、表型驗證與數據分析

檢測目標方法膿毒癥標志
炎癥因子風暴血清ELISA(IL-6、HMGB1)IL-6 > 1 ng/mL(重度膿毒癥)
器官損傷組織HE染色(肺、肝、腎)肺水腫、肝細胞壞死、腎小管空泡化
凝血功能障礙血漿D-二聚體檢測水平顯著升高
代謝紊亂血糖/乳酸檢測(尾靜脈采血)早期高血糖,晚期低血糖伴高乳酸血癥
細菌載量血液/器官CFU計數血液>1×10^4 CFU/mL提示菌血癥

四、注意事項與優化策略

  1. 動物品系選擇

    • C57BL/6小鼠對炎癥耐受性強,BALB/c更易發生休克。

  2. 感染劑量控制

    • 活菌模型需通過預實驗繪制生存曲線(如6h-72h)。

  3. CLP手術技巧

    • 結扎位置和穿孔大小是影響重復性的關鍵因素。

  4. 人道終點

    • 體重下降≥20%、無法自主進食、呼吸窘迫時需安樂si。


五、模型局限性及替代方案

  • 局限性

    • LPS模型不能模擬膿毒癥免疫抑制期。

    • CLP模型操作者依賴性高。

  • 替代方案

    • 結腸支架植入模型:將糞便封入可降解支架植入腹腔,模擬可控感染源


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